Соколов Н.М., Ягова И.В.
РОЛЬ ТРОМБОЦИТОВ В РЕПАРАТИВНЫХ И ИММУННЫХ ПРОЦЕССАХ ПРИ ИСПОЛЬЗОВАНИИ ПЛАЗМЫ, ОБОГАЩЁННОЙ ТРОМБОЦИТАМИ *
Аннотация:
в работе рассмотрена роль тромбоцитов и тромбоцитарных факторов роста в репаративных и иммунных процессах при использовании плазмы, обогащённой тромбоцитами в различных областях медицины. Представлен план строения и функций тромбоцитов и их гранул. При помощи современных лабораторных инструментов рассмотрены способы получения плазмы, обогащённой тромбоцитами, способы её изготовления и классификация.
Ключевые слова:
плазма, обогащённость тромбоцитами, факторы роста, тромбоцитспецифические гранулы, белки, регенерация тканей, иммунный ответ, гормональное восстановление
DOI 10.24412/2712-8849-2025-990-476-499
Тромбоциты – безъядерные клетки крови, выполняющие следующие функции (рис. 1 и рис. 2): запуск немедленного гемостаза за счёт адгезии и агрегации тромбоцитов, что приводит к формированию тромбоцитарной пробки, местное выделение вазоконстрикторов для уменьшения кровотока в поражённом участке, катализ реакций гуморальной системы свёртывания с образованием фибринового сгустка, инициирование регенерации тканей, регулирование местной воспалительной реакции и иммунитета. В настоящее время учёные обратили своё внимание на изучение мало исследованных функции тромбоцитов – регенерация тканей и участие в иммунных реакциях. Тромбоциты имеют сложное строение и многочисленные факторы роста, которые стимулируют неоангиогенез, рост и регенерацию тканей. Кроме того, они влияют на противоопухолевую защиту и метастазирование опухолей [5, 152].Рис. 1. Гранулы цитоплазмы и их химические вещества неактивированных тромбоцитов.В состоянии покоя тромбоцит представляет собой дискообразную клетку с гладкой цитоплазматической мембраной, поддерживаемой микротубулиновым кольцом. Мембрана клетки инвагинирует и соединяется с сетью многочисленных каналов, так называемой открытой канальцевой системой (ОКС), которые тесно переплетены внутри тромбоцита. Центральные каналы этой системы соединяются с внеклеточным пространством и открытая канальцевая система экспрессирует те же гликопротеины, что и клеточная мембрана [5, 153].Вторая система внутренней оболочки (плотная тубулярная система), которая образуется из эндоплазматического ретикулума мегакариоцита, не зависит от открытой канальцевой системы и не соединяется с внеклеточным пространством.Сократительные микрофиламенты распространяются от субмембранного пространства по всей цитоплазме тромбоцита и обуславливают изменения его формы, происходящие во время активации клетки.В цитоплазме неактивированных тромбоцитов можно обнаружить 4 вида гранул: а-гранулы, плотные гранулы, лизосомы и пероксисомы (таб. 1 и рис. 2).Многочисленные а-гранулы (таб. 2) содержат тромбоцитоспецифические и тромбоцитонеспецифические пептиды, участвующие в механизмах коагуляции, иммунитета и репарации. Плотные гранулы представляют собой хранилище АДФ и серотонина — веществ, способствующих агрегации тромбоцитов, а также антиагреганта АТФ и основного кофактора коагуляции Ca. Лизосомальные гранулы содержат гидролитические ферменты, а пероксисомы — каталазу [5, 154].Таблица 1. Гранулы цитоплазмы и их химические вещества неактивированных тромбоцитов.Таблица 2. Компоненты а-гранул тромбоцита и их функции.Белковые соединения а–гранул участвуют в физиологических и патологических процессах: митогенный и хемотаксический эффекты, адгезивное действие, модулирование агрегации тромбоцитов, участие в плазменном гемостазе, вазоактивное действие, иммунные эффекты.Наружная клеточная оболочка и ОКС усеяны гликопротеинами, играющими важную роль в адгезии и агрегации тромбоцитов. Эти молекулы состоят из наружных доменов, действующих в качестве рецепторов, которые связываются с внеклеточными адгезивными веществами (фибриногеном, коллагеном, фактором Вилленбранда), и трансмембранных пептидов, которые фиксируют гликопротеины и опосредуют процессы активации тромбоцитов и изменения их формы. Большинство гликопротеинов, за исключением гликопротеинового комплекса Ib-IX, кодируется генами интегринового семейства. На тромбоцитарных мембранах имеются рецепторы для физиологических медиаторов активации тромбоцитов (АДФ, адреналина, серотонина и тромбоксана А2) [5, 155].Рис. 2. Гранулы цитоплазмы и их химические вещества неактивированных тромбоцитов.Развитие молекулярных технологий и поиски новых эффективных методов стимуляции регенеративных процессов привели к открытию свойств аутологичной плазмы, обогащенной тромбоцитами, или Platelet Rich Plasma (PRP), которая впервые исследована в Калифорнийском университете в 1965 г. Было выявлено, что из α-гранул тромбоцитов (таб. 3) в случае их разрушения и активации в плазму выделяются различные биологически активные вещества вещества: такие, как например - фактор роста тромбоцитов (PDGF), трансформирующий фактор роста бета (TGF-β) и эпидермальный фактор роста (EGF). Данные факторы содержатся в раневых экссудатах, способствуют пролиферации и ангиогенезу на ранних стадиях процесса заживления, а также являются ключевыми сигналами в восстановлении и регенерации тканей [3, 20].Таблица 3. Биологическая роль основных факторов роста, содержащихся в PRP.TGF-β (Трансформирующий фактор роста-β) — это белок, состоящий из цепочки аминокислот. TGF-β1 (один из самых изученных изоформ) представляет собой димерный белок, состоящий из двух идентичных полипептидных цепей. Он содержит 112 аминокислот в активной форме, а полная препроформула включает ~390 аминокислот (C211H345N61O62S).IGF-1 (Инсулиноподобный фактор роста-1) - состоит из 70 аминокислот, соединенных в единую цепь с тремя внутримолекулярными дисульфидными мостиками, локализуется в юных хондробластах на границе хрящевой ткани костной мозоли с фиброзной тканью, обеспечивает клеточный рост (C71H119N17O19S).Рис. 3. IGF-1 (Инсулиноподобный фактор роста-1).Основной фактор роста фибробластов (bFGF или FGF2) представляет собой малый белок, относящийся к семейству факторов роста FGF (Fibroblast Growth Factor). Состоит из 146 аминокислот и почти исключительно из β-структур — 12 антипараллельных β-нитей, формирующих трефоидную (клеверную) структуру. В отличие от TGF-β, bFGF не содержит дисульфидных связей в своей зрелой форме, что делает его более гибким и растворимым в цитозоле.Рис. 4. Основной фактор роста фибробластов (bFGF или FGF2).В настоящее время имеется обширная доказательная база и научное обоснование применения PRP при лечении различных заболеваний. PRP с успехом используется в клинической практике косметологов, стоматологов, ортопедов-травматологов, урологов, общих хирургов и во многих других областях медицины. Несмотря на открытия широчайшего спектра применения PRP в терапевтических целях, клинические эффекты плазмы, обогащённой тромбоцитами, до сих пор весьма разнообразны. PRP может стимулировать пролиферацию дермальных фибробластов человека и увеличивать синтез коллагена I типа in vitro.Кроме того, согласно гистологическим данным, PRP при введении в глубокую дерму и непосредственно подкожную клетчатку вызывает активацию фибробластов и отложение нового коллагена, а также ангиогенез и липогенез. PRP используется в регенеративной медицине для лечения трофических язв, заболеваний опорно-двигательного аппарата, для восстановления тканей после операции, улучшения кровообращения при хронических ранах, связанных с невропатиями и сосудистыми поражениями. PRP применяется при лечении послеожоговых и послеоперационных рубцов и рубцов от угревой сыпи.Классификация PRP. Препараты PRP, полученные при помощи разных технологий, различаются по качественному и количественному составу компонентов. В зависимости от количественного содержания в препаратах лейкоцитов и фибрина их можно разделить на 4 группы [3, 23]:Чистая обогащенная тромбоцитами плазма крови (P-PRP – Pure Platelet Rich Plasma),обогащенная лейкоцитами и тромбоцитами плазма крови (L-PRP – Leucocyte and Platelet Rich Plasma),чистый обогащенный тромбоцитами фибрин (P-PRF – Pure Platelet Rich Fibrin),обогащенный лейкоцитами и тромбоцитами фибрин (L-PRF – Leucocyte and Platelet Rich Fibrin).Для активации тромбоцитов в PRP могут использоваться как химические, так и физические факторы (вещества):Коллаген,Батроксобин,Хлорид кальция и/или тромбин [4, 73],Цитрат натрия,Декстроза, фосфатные буферы, лимонная кислота,циклы «замораживание-размораживание»,воздействие лазером, электрическим полем, ультразвуком или полихроматическим светом.Рис. 5. Коллаген II-типа.Рис. 6. Батроксорбин.Дегрануляция тромбоцитов начинается в течение первых минут после активации и продолжается до 1 часа.По составу основных компонентов:Чистая обогащённая тромбоцитами плазма (P-PRP), содержит только плазму и тромбоциты в высокой концентрации.Лейкоцитарная PRP (L-PRP), содержит плазму с повышенной концентрацией тромбоцитов и лейкоциты (концентрация лейкоцитов может быть выше или ниже, чем в цельной крови).Обогащённый тромбоцитами фибрин (PRF), желеобразный препарат, готовится без антикоагулянта, содержит плазму и фибрин с высокой концентрацией тромбоцитов.Фибрин, обогащённый тромбоцитами и лейкоцитами (L-PRF), желеобразный препарат, содержит плазму и фибрин с высокой концентрацией тромбоцитов и лейкоцитов.Комбинированные препараты (например, содержащие гиалуроновую кислоту, стволовые клетки костного мозга или соединительной ткани, а также другие биологически активные компоненты).По количеству тромбоцитов в препарате:С низкой концентрацией тромбоцитов (концентрация тромбоцитов от базовой до 750×109/л), PRP LC.Со средней концентрацией тромбоцитов (от 750×109/л до 1 200×109/л), PRP MC.С высокой концентрацией тромбоцитов (≥1 200×109/л), PRP HC.По степени активности PRP:Неактивированная PRP (NA PRP).Активированная PRP (A PRP).По количеству лейкоцитов в препарате:С концентрацией лейкоцитов ниже нормальной (<4×109/л), LL-PRP.С концентрацией лейкоцитов в пределах нормы (4-9×109/л), ML-PRP.С концентрацией лейкоцитов выше нормальной (>9×109/л), HL-PRP [1, 24].По источнику получения тромбоцитов:Аутологичная PRP (aPRP), получаемая из крови пациента.Аллогенная PRP (alPRP), получаемая из крови донора.Способы получения и концентрация тромбоцитов. Количественный и качественный клеточный состав плазмы имеет важное значение. Большинство авторов сходятся во мнении, что терапевтической концентрацией следует считать содержание тромбоцитов не менее 106/мкл. Существует множество способов приготовления PRP, однако стандартизированного протокола до сих пор не разработано. Более того, мало научных исследований, посвященных тому, как оптимизировать приготовление PRP человека. Например, не проводилось всестороннего исследования, каким образом центробежная сила, действующая на образцы периферической крови при центрифугировании, влияет на характеристики PRP.Процедура получения PRP состоит из следующих этапов:Забор крови у пациента в ёмкость с антикоагулянтом (или без него).Центрифугирование крови.Выделение плазмы с высокой концентрацией тромбоцитов.Активация тромбоцитов (необязательный этап).Кровь для исследования забирали в вакуумные пробирки в объеме 5 мл из локтевой вены у здоровых добровольцев [4, 68]. Для сепарации форменных элементов крови в пробирке применяли стандартную лабораторную центрифугу СМ-6М. Всего проведено 65 исследований концентрации тромбоцитов в полученных образцах плазмы. В группу 1 вошли 45 исследований, проведенных с использованием вакуумных пробирок 13×100 мм с литий-гепарином. При этом все они были разделены на 3 подгруппы по 15 пробирок в зависимости от режима центрифугирования:В 1-й подгруппе применялся режим 1000 об./мин в течение 5 мин (центробежная сила в 184 g.).Во 2-й подгруппе центрифугирование осуществляли со скоростью 1500 об./мин (415 g) в течение 10 мин.В подгруппе 3 применялся режим 3000 (1660 g) об./мин в течение 10 мин.Рис. 7. Лабораторная центрифуга СМ-6М.В группе сравнения кровь забирали в 20 вакуумных пробирок 13×100 мм, содержащих помимо литий-гепарина сепарационный гель. Режим центрифугирования для группы сравнения был выбран со скоростью 2000 об./мин (738 g) в течение 10 мин. После окончания центрифугирования визуально разделяли плазму на верхний, средний и нижний слой и отбирали по 800 мкл из каждого слоя в трех пробах (рис. 8 и схема 1). Образцы окрашивали по Паппенгейму, считали количество тромбоцитов и лейкоцитов до центрифугирования и в каждом из слоев после центрифугирования [1, 39].Рис. 8. Области для отбора проб обогащенной тромбоцитами плазмы после центрифугирования образцов.Среднее количество тромбоцитов в цельной крови, взятой для исследования, в 1-й группе составило 273,2 ± 15,8 тыс./мкл., что соответствовало нормальным показателям содержания тромбоцитов в периферической крови человека. Во всех подгруппах после применения центрифугирования терапевтической концентрации тромбоцитов в верхних слоях образцов не обнаружено, количество тромбоцитов определялось в пределах от 175,3 ± 9,3 до 401,6 ± 22,7 тыс./мкл. После проведения первого режима центрифугирования со скоростью 1000 об./мин (184 g) в течение 5 мин содержание тромбоцитов [1, 40]:В верхнем слое образца плазмы составило 401,6 ± 25,3 тыс./мкл,в среднем слое – 891,8 ± 37,2 тыс./мкл,в нижнем слое – 1136,1 ± 44,4 тыс./мкл (рис. 9).Рис. 9. Концентрация тромбоцитов в образцах плазмы 1-й группы.Прим.: р <0,05 относительно показателей для верхнего слоя внутри подгруппы, р <0,05 относительно показателей для верхнего слоя между подгруппами,*среднее арифметическое от медианных значений кол-ва тромбоцитов [1, 40].Наибольшую концентрацию тромбоцитов в нижнем слое плазмы – 1723,5 ± 125,4 тыс./мкл удалось получить при проведении второго режима центрифугирования со скоростью 1500 об./мин (415 g) в течение 10 мин. При этом в среднем слое образца также отмечалась достаточно высокая концентрация тромбоцитов, чтобы считать эту плазму обогащенной – 1002,9 ±77,1 тыс./мкл. В результате центрифугирования образцов плазмы подгруппы 3 в режиме 3000 (1660 g) об./мин в течение 10 мин получены наибольшие показатели концентрации тромбоцитов в среднем слое образца –1351,7 ± 96,3 тыс./мкл.Наименьшее количество примесей в виде лейкоцитов обнаружено в верхних и средних слоях образцов плазмы – от 0,3 до 0,6 тыс./мкл. В нижних слоях плазмы во всех случаях определялась высокая концентрация лейкоцитов в пределах от 1,9 до 5,2 тыс./мкл.Среднее количество тромбоцитов цельной крови перед центрифугированием пробирок из группы 2 составило 273,2 ± 19,8 тыс./мкл. При центрифугировании пробирок, содержащих сепарационный гель, в режиме 2000 об./мин (738 g) в течение 10 мин. не удалось добиться терапевтической концентрации тромбоцитов ни в одном случае [1, 41].Среднее содержание тромбоцитов в верхнем слое образца плазмы составило 23,1 ± 1,4 тыс./мкл, в нижнем слое – 210,1 ± 12,2 тыс./мкл. При этом в верхнем слое плазмы примеси в виде лейкоцитов отсутствуют, в нижнем слое образца концентрация лейкоцитов составила 0,1 ± 0,05 тыс./мкл.Максимальными по количеству тромбоцитов являются образцы плазмы нижнего слоя, полученные при режимах центрифугирования 415 и 1660 g в течение 10 мин с использованием пробирок без сепарационного геля. Образцы среднего слоя содержат более 106/мкл. тромбоцитов и менее 103/мкл. лейкоцитов и также могут быть использованы в терапевтических целях. Следует учитывать, что отбор плазмы из нижнего слоя полученного образца после центрифугирования всегда проводится с включением в состав лейкоцитов, что может приводить к нежелательным провоспалительным реакциям при ее применении [1, 42]. В этом направлении продолжаются проводится клинические исследования.Показания к терапии PRP. PRP применяется в различных областях медицины благодаря своему регенеративному (репарационному) эффекту:В ортопедии и спортивной медицине:артрозы,травмы и заболевания хрящевой ткани, связок, сухожилий (разрывы, тендиниты, лигаментиты),восстановление после переломов, операций на опорно-двигательном аппарате,боли в суставах и позвоночнике, вызванные дегенеративными изменениями.В косметологии и трихологии:признаки старения кожи (дряблость, морщины, снижение тонуса),пигментные пятна, постакне, рубцы, шрамы,алопеция, замедленный рост волос,восстановление кожи после лазерных шлифовок, пилингов и других агрессивных процедур.В дерматологии:хронические воспалительные заболевания кожи (дерматиты, псориаз, экзема),В хирургии и пластической хирургии:медленно заживающие раны, язвы, ожоги,растяжки, рубцы.В стоматологии:воспалительные заболевания дёсен (пародонтоз, пародонтит),восстановление после удаления зубов и других хирургических вмешательств.Таким образом, терапия плазмой, обогащенной тромбоцитами, показана при состояниях, связанных с замедленным восстановлением тканей, наличием воспалительных процессов и косметических дефектов.Противопоказания к терапии PRP.Несмотря на безопасность PRP-терапии, существуют состояния, при которых проведение лечения невозможно или нежелательно:Онкологические заболевания,аутоиммунные болезни — системная красная волчанка, ревматоидный артрит, склеродермия,лихорадка, грипп, ОРВИ, бактериальные и вирусные инфекции,ВИЧ-инфекция, вирусные гепатиты B и C в активной фазе,заболевания крови — гемофилия, выраженная тромбоцитопения, тромбоцитопатия, анемия,беременность и период грудного вскармливания,хронические заболевания в стадии обострения,длительный приём препаратов, разжижающих кровь, если их нельзя временно отменить,аллергия на антикоагулянты, применяемые в составе PRP,гнойные, другие инфекционные поражения в предполагаемой зоне введения препарата.Использование PRP в кардиохирургии. Аутоплазма, обогащенная тромбоцитами (PRP), широко применяется в кардиохирургии. Чтобы изучить влияние секвестрации плазмы и реинфузии богатой тромбоцитами плазмы на кровопотерю после сердечно-легочного шунтирования, пациентам, перенесших операции на сердце, применяли приблизительно 250 мл богатой тромбоцитами плазмы до начала сердечно-легочного шунтирования. У всех пациентов были применены стандартизированная анестезия и искусственное кровообращение. После отмены гепарина плазма, обогащенная аутологичными тромбоцитами, была реинфузирована пациентам. Количество тромбоцитов, гемоглобина и гематокрита рассчитывали до, во время и после искусственного кровообращения, а также спустя 24 и 48 часов после операции. Зарегистрированы кровопотеря и общее количество переливаний. При удалении 9% от общего объема тромбоцитов не было никаких гемодинамических осложнений. У пациентов после искусственного кровообращения были отмечены значительно низкие уровни тромбоцитов, гемоглобина и гематокрита. У больных с реинфузией плазмы, богатой тромбоцитами, после реверсии гепарина количество тромбоцитов было значительно выше, а также была значительно меньшая кровопотеря после операции, что потребовало на 65% меньше накопленных продуктов крови (р менее 0,05). Реинфузия плазмы, обогащенной аутологичными тромбоцитами, служит эффективным и безопасным способом восстановления некоторых гематологических нарушений после сердечно-легочного шунтирования.Также PRP используется для предотвращения инфекций грудины при создании доступа к сердцу (например, при срединной стернотомии, которая остается предпочтительным доступом для большинства операций). Однако глубокая инфекция раны грудины (DSWI) после срединной стернотомии остается опасным для жизни осложнением. Возможность уменьшить DSWI после операции, столь распространенной, как операция на открытом сердце, имеет важные последствия для пациентов, лиц, осуществляющих уход, больниц и плательщиков. В то время как достижения в хирургической обработке, непрерывной ирригации антибиотиками, закрытии лоскута снизили смертность, связанную с DSWI, за последние 40 лет, частота осложнений раны грудины не изменилась с 1980-х годов. Использование аутологичной PRP для профилактики DSWI было предложено с хорошими клиническими результатами. Считается, что заживление после срединной стернотомии улучшается за счет факторов роста, высвобождаемых PRP. Трансформирующие факторы роста-бета, фактор роста эндотелия сосудов и фактор роста эпителия стимулируют пролиферацию, миграцию, дифференцировку клеток и синтез матрикса. Эти же факторы могут влиять на метаболизм хондроцитов, хондрогенез и улучшать заживление и регенерацию костей. Комбинация факторов роста, содержащихся в PRP, которые высвобождаются в место операции, является предполагаемым механизмом действия для улучшения заживления раны грудины [6].Кроме того, Staphylococcus aureus, наиболее распространенная бактерия, ответственная за DSWI, может быть подавлена применением PRP. В нескольких исследованиях было предложено использование аутологичного нанесения PRP перед закрытием раны при операциях на сердце со смешанными результатами. Эти исследования, хотя и были проспективными по дизайну, были недостаточно мощными для эффективной оценки любых эффектов лечения из-за небольшого числа включенных пациентов [6].Данное исследование демонстрирует, что рутинное применение PRP снижает частоту DSWI, а также общие затраты на лечение, что приводит к абсолютному снижению риска на 7,41%. Для 2000 пациентов, включенных в данное исследование, применение PRP во время хирургического закрытия грудины оказалось безопасным и значительно снизило частоту послеоперационных инфекций в группе лечения. PRP — это безопасный, простой и воспроизводимый метод лечения, который, по всей видимости, обеспечивает как клинические, так и финансовые преимущества пациентам, перенесшим стернотомию при кардиохирургических вмешательствах. Добавление PRP ко всем видам закрытия грудины после кардиохирургических операций приносит пользу, улучшая качество лечения и снижая затраты.Использование PRP в общей хирургии и проктологии. Аутологичная и аллогенная PRP продемонстрировали свою эффективность в лечении хронических язв нижних конечностей различной этиологии. В эксперименте было доказано положительное влияние внутримышечных инъекций P-PRP и L-PRP на неоангиогенез при устранении ишемии нижних конечностей. Немаловажную роль в заживлении ран играет и бактериостатический эффект PRP. Последнее время появляется всё больше данных относительно того, что обогащённая тромбоцитами плазма (особенно A PRP) улучшает интеграцию в ткани различных биологических и синтетических трансплантатов.В проктологической практике PRP успешно применяется для ускорения заживления послеоперационных ран после лечения анальной трещины и эпителиального копчикового хода (пилонидальной кисты с абсцессом). Отмечается прогресс при использовании PRP при лечении хронической раны нижних конечностей у пациентов с диабетом 2-го типа продолжительностью шесть месяцев. Лечение раны PRP последовало после неудавшейся попытки применения трансплантата живой кожи, сопровождаемого разгрузкой и ежедневными применениями мокрой и сухой повязок.Использование PRP в косметологии и дерматологии. На протяжении многих лет PRP успешно применяется для лечения алопеции различного генеза. Инъекции PRP в область волосистой части головы значительно снижают скорость выпадения волос, увеличивают их густоту и толщину. При этом эффективность препарата пропорциональна концентрации тромбоцитов. PRP волосистой части головы является лечением выбора после трансплантации волосяных луковиц. В косметологии PRP в виде различных препаратов (обычно P-PRP или PRF) успешно используется для общего увлажнения и омоложения кожи, для лечения акне и рубцов [3, 26].Использование PRP в травматологии и ортопедии. PRP обладает выраженным противовоспалительным, обезболивающим, прорегенераторным и антиапоптотическим действием, стимулирует рост и миграцию фибробластов и остеобластов [3, 25]. Поэтому она широко используется для лечения последствий травм опорно-двигательного аппарата и дистрофических изменений в суставах. Многочисленными исследованиями доказана эффективность PRP при пателлярной тендинопатии, остеоартрозе коленного сустава, латеральном эпикондилите, повреждении ротаторной манжеты плеча, травмах сухожилий и мышц различной локализации. Кроме того, PRP успешно проявила себя в восстановлении дефектов костей, в том числе посредством улучшения приживления костных трансплантатов.Использование PRP в урологии и гинекологии. Обогащённая тромбоцитами плазма непрерывно находит всё новые области применения в гинекологии и урологии.В гинекологической практике, помимо коррекции проблем, связанных с возрастной атрофией кожи и слизистых половых органов, PRP успешно применяется для лечения крауроза вульвы, слабости мышц тазового дна, опущения стенок влагалища, воспалительных заболеваний половой сферы. Перспективным направлением является применение PRP в области вспомогательной репродукции. PRP-терапия может проводиться изолированно либо в комбинации с лазерной или хирургической коррекцией. Основной областью применения PRP в урологии является лечение эректильной дисфункции.Использование PRP в неврологии. За счёт противовоспалительного и обезболивающего эффектов препараты PRP позволяют эффективно лечить хроническую нейропатическую боль. Это обеспечивается модуляцией местного воспаления, стимуляцией регенерации повреждённых тканей и ингибированием выработки ноцицептивных медиаторов боли [3, 26].Препараты PRP стимулируют регенерацию повреждённых аксонов нервных клеток. Экспериментальные исследования на мышах показали, что раннее введение (в течение 24 часов после травмы) аллогенной PRP в область повреждённого спинного мозга значимо увеличивает скорость и качество его регенерации с восстановлением активных координированных движений.Использование PRP в стоматологии и челюстно-лицевой хирургии. Было установлено положительное влияние PRP и PRF на заживление ран после экстракции зуба мудрости. PRP улучшает регенерацию пульпы зубов. Изучаются перспективные направления использования PRP для улучшения интеграции зубных протезов [3, 27].Выводы. За последние десятилетия накоплено большое количество информации относительно эффектов тромбоцитарных факторов роста (биологически активных веществ). Непрерывно расширяется спектр областей успешного применения различных разновидностей PRP. Однако при использовании обогащённой тромбоцитами плазмы остаётся немало противоречий. Они связаны со следующими моментами:Различия в методах получения препаратов PRP. Это приводит к значимым различиям состава PRP и влияет на эффективность препарата. Определённая эффективность имеется у PRP c любой концентрацией тромбоцитов. Однако она особенно значима при концентрации тромбоцитов ≥1000 000 на мл.Различия в способах доставки PRP. Большую важность играет доза введённого препарата и способ введения. Основными способами доставки PRP являются аппликация и инъекция. Введение PRP посредством аппликации характерно для его интраоперационного использования.Правильный выбор препарата. P-PRP может использоваться с любой целью, в то время как использование L-PRP и L-PRF предпочтительно для стимуляции заживления ран и восстановления связочного аппарата. P-PRF позволяет производить своеобразное биоармирование тканей, вследствие чего широко используется в косметологии для омоложения кожи. Несмотря на постепенную активацию неактивированных тромбоцитов в тканях, большей биологической активностью обладает A PRP.Перспективными направлениями работы являются:Разработка дешёвых и эффективных методов получения продуктов PRP с заданными характеристиками.Использование PRP в регенеративной и репродуктивной медицине.Дальнейшее изучение влияния PRP на эффективность интеграции в ткани биологических, биосинтетических и синтетических протезов.Расширение количества областей применения препаратов PRP (например, интервенционная кардиология, неврология и нейрохирургия).Учитывая особенности и свойства плазмы, обогащённой тромбоцитами (аутогенность, отсутствие аллергических реакций, использование уникальных факторов роста (белков данного организма), которые следуют собственной генетической программе), её дальнейшее усовершенствование позволит медицине сделать значительный скачок в научном и техническом аспекте. PRP позволит перейти от обобщённого и рутинного техницизма к персонализированному (индивидуализированному) подходу к конкретному человеку (организму) и его уникальному геному. Это улучшит качество оказываемой помощи и избавит от значительного количества осложнений, возникающих при использовании рутинных методик (медикаментозной терапии и оперативного лечения).
Номер журнала Вестник науки №9 (90) том 2
Ссылка для цитирования:
Соколов Н.М., Ягова И.В. РОЛЬ ТРОМБОЦИТОВ В РЕПАРАТИВНЫХ И ИММУННЫХ ПРОЦЕССАХ ПРИ ИСПОЛЬЗОВАНИИ ПЛАЗМЫ, ОБОГАЩЁННОЙ ТРОМБОЦИТАМИ // Вестник науки №9 (90) том 2. С. 476 - 499. 2025 г. ISSN 2712-8849 // Электронный ресурс: https://www.вестник-науки.рф/article/25610 (дата обращения: 07.02.2026 г.)
Вестник науки © 2025. 16+